Metabolitos con potencial fitohormonal en el cultivo de especies vegetales: aplicaciones en biotecnología
DOI:
https://doi.org/10.56205/ret.2-1.2Palabras clave:
Reguladores de crecimiento vegetal; Metabolitos secundarios; Metabolismo vegetal, Enraizantes; Bioestimulantes.Resumen
Existen reguladores de crecimiento o fitohormonas que son utilizadas en los cultivos de especies vegetales In vitro /Ex vitro; actualmente se han descubierto más de 10 grupos de compuestos fitohormonales que se utilizan para acelerar y controlar de manera específica el crecimiento de los organismos vegetales o algunos de sus tejidos. Así mismo, se han estudiado diferentes fuentes de metabolitos con potencial fitohormonal sintéticos y orgánicos, con el fin de ser utilizadas en diferentes procesos biotecnológicos. La búsqueda de nuevas fuentes metabólicas para la producción de reguladores de crecimiento permite mejorar la calidad de la producción de plantas, disminuir costos de producción y obtener mejores productos derivados de ellas como los metabolitos secundarios; el objetivo de esta revisión fue describir el uso de algunas fuentes biológicas de origen vegetal como las lentejas, el agua de coco, el Aloe vera y la miel, además, fuentes de origen microbiológico como las rizobacterias, micorrizas y enterobacterias con capacidad de producción de metabolitos con potencial fitohormonal. Estas fuentes pueden ser utilizadas en diferentes procesos de biotecnología vegetal. También se revisaron algunos microrganismos que pueden actuar como bioestimulantes (bacterias y micorrizas) que tienen potencial para mejorar el crecimiento vegetal. El uso de estas nuevas fuentes metabólicas permitirá facilitar el proceso de producción vegetal In vitro y/o Ex vitro, buscando de esta manera técnicas novedosas que permitan reemplazar los reguladores empleados comúnmente (ácido naftalen-acético; 2,4-D; ácido indol butírico, etc.), que suelen ser costosos y tóxicos para el ambiente por las técnicas utilizadas para su producción.
Descargas
Citas
Alcántara, J. (2018). Evaluación de la Propagación In vitro de Witheringia coccoloboides suplementada con productos orgánicos. Manuscrito no publicado. Bogotá D.C: Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca, Facultad de Ciencias de la Salud.
Asaduzzaman, M., Rahman, M., Munira, S., Rahman, M., Islam, M., Hasan, M., Islam, M. (2015). Analysis of Biochemical Composition of Honey and its Anti-Oxidant, Phytochemical and Anti-Bacterial Properties. Biomedical and Pharmaceutical Research, 4(4), 69-81. Recuperado de http://www.academia.edu/15224880/Analysis_of_Biochemical_Composition_of_Honey
_and_its_Anti-Oxidant_Phytochemical_and_Anti-Bacterial_Properties
Bashan, Y., y De-Bashan, L. (2010). How the plant growth-promoting bacterium azospirillum promotes plant growth-a critical assessment. Advances in Agronomy, 108(C), 77-136. https://doi.org/10.1016/S0065-2113(10)08002-8
Benjumeda, D. (2017). Bacterias promotoras del crecimiento vegetal: Mecanismos y aplicaciones. Universidad de Sevilla, Facultad de Farmacia.
Bílkay, I., Karakoç, Ş., y Aksöz, N. (2010). Indole-3-acetic acid and gibberellic acid production in Aspergillus niger. Turk J Biol, 34, 313-318. https://doi.org/10.3906/biy-0812-15
Boase, M., Wright, S., y McLeay, P. (1993). Coconut milk enhancement of axillary shoot growth in vitro of kiwifruit. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science, 21(2), 171-176. https://doi.org/10.1080/01140671.1993.9513764
Bolívar, H, Contreras, M., y Teherán, L. (2016). Burkholderia tropica Una Bacteria Con Gran Potencial Para Su Uso en la Agricultura. Tip, 19(2), 102-108. https://doi.org/10.1016/j.recqb.2016.06.003
Buba, F., Gidado, A., y Shugaba, A. (2012). Analysis of Biochemical Composition of Honey Samples from North-East Nigeria. Biochemistry & Analytical Biochemistry, 2(3), 1-7.https://doi.org/10.4172/2161-1009.1000139
Cajamarca, E. (2016). Determinación De La Eficiencia De Hormonas En La Propagación Por Ramillas De Cacao Tipo Nacional (Universidad Técnica de Machala). Universidad Técnica de Machala. Recuperado de http://repositorio.utmachala.edu.ec/bitstream/48000/7645/1/DE00036_TRABAJODETI TULACION.pdf
Calvo, P., Nelson, L., y Kloepper, J. (2014). Agricultural uses of plant biostimulants. Plant and Soil, 383(1-2), 3-41. https://doi.org/10.1007/s11104-014-2131-8
Castanheira, N., Dourado, A., Kruz, S., Alves, P., Delgado, A., Pais, I., y Fareleira, P. (2016). Plant growth-promoting Burkholderia species isolated from annual ryegrass in Portuguese soils. Journal of Applied Microbiology, 120(3), 724-739. https://doi.org/10.1111/jam.13025
Castrillón, J., Carvajal, E., Ligarreto, G., y Magnitskiy, S. (2008). El efecto de auxinas sobre el enraizamiento de las estacas de agraz (Vaccinium meridionale Swartz) en diferentes sustratos. Agronomia Colombiana, 26(1), 16-22. Recuperado de http://www.scielo.org.co/scielo.php?pid=S0120- 99652008000100003&script=sci_abstract&tlng=es
Cruz, M., Melgarejo, L., y Romero, M. (2012). Fitohormonas. En Experimentos en fisiología y bioquímica vegetal, Universidad Nacional de Colombia, (24), 1-277. Recuperado de http://www.bdigital.unal.edu.co/8545/9/05_Cap03.pdf
Cubillos, J., Valero, N., y Mejía, L. (2009). Trichoderma harzianum como promotor del crecimiento vegetal del maracuyá (Passiflora edulis var. flavicarpa Degener). Agronomía Colombiana, 27(1), 81-86. Recuperado de http://revistas.unal.edu.co/index.php/agrocol/article/view/11363/37730
De Souza, R., Ambrosini, A., y Passaglia, L. (2015). Plant growth-promoting bacteria as inoculants in agricultural soils. Genetics and Molecular Biology, 38(4), 401-419. https://doi.org/10.1590/S1415-475738420150053Deolankar, S., Chakarborthy, I., Kamarudheen, N., y Bhaskara, K. (2015). Evaluation of plant growth promoting activity of rhizosphere bacteria of different crop plants. Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences, 6(4), 683-689. Recuperado de
https://www.researchgate.net/publication/281437646_Evaluation_of_Plant_Growth_Pro moting_Activity_of_Rhizosphere_Bacteria_of_Different_Crop_Plants
Dey, N., Sarkar, S., Acharya, S., y Maiti, I. (2015). Synthetic promoters in planta. Planta, 242(5), 1077-1094. https://doi.org/10.1007/s00425-015-2377-2
Ding, W., Zhang, Y., y Shi, S. (2020). Development and Application of CRISPR/Cas in Microbial Biotechnology. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology, 8, 1-22. https://doi.org/10.3389/fbioe.2020.00711
Domínguez, R., Arzate, I., Chanona, J., Welti, J., Alvarado, J., Garibay, V., y Gutiérrez, G. (2012). El gel de Aloe vera: Estructura, composición química, procesameinto, actividad biológica e importancia en la industria farmacéutica y alimentaria. Revista Mexicana de Ingeniera Qumica, 11(1), 23-43. https://doi.org/10.1186/1471-2334-1-7
Duca, D., Rose, D., y Glick, B. (2018). Indole acetic acid overproduction transformants of the rhizobacterium Pseudomonas sp. UW4. Antonie van Leeuwenhoek, International Journal of General and Molecular Microbiology, 1-16. https://doi.org/10.1007/s10482-018-1051- 7
Erb, M., y Kliebenstein, D. (2020). Plant Secondary Metabolites as Defenses, Regulators, and Primary Metabolites: The Blurred Functional Trichotomy. Plant Physiology, 184(1), 39- 52. https://doi.org/10.1104/PP.20.00433
Fazilati, M., y Forghani, A. (2015). The role of polyamine to increasing growth of plant : As a key factor in health crisis. 3(2), 89-94. https://doi.org/10.4103/2347-9019.151316
Fedna. (2010). Lentejas (Lentils Lens esculenta Planta). Fedna, 221-222. https://doi.org/10.1111/1750-3841.13915
Filová, A. (2014). Production of Secondary Metabolities In Plant Tissue Cultures. ResearchJournal of Agricultural Science, 46(1), 236-246.
https://doi.org/10.3891/acta.chem.scand.16-0843
Finkelstein, R. (2013). Abscisic Acid Synthesis and Response. The Arabidopsis Book, 1, 1-36. https://doi.org/10.1199/tab.0166
Firth, C., y Trask, A. (2017). Honey as an alternative rooting stimulant for cuttings. University of Hawai, 1-5. Recuperado de https://www.ctahr.hawaii.edu/uhmg/news/V21-honey- rooting-Firth.pdf
Flasiński, M., y Hac, K. (2014a). Natural vs synthetic auxin: Studies on the interactions between plant hormones and biological membrane lipids. Environmental Research, 133, 123-134. https://doi.org/10.1016/j.envres.2014.05.019
Flasiński, M., y Hac, K. (2014b). Natural vs synthetic auxin: Studies on the interactions between plant hormones and biological membrane lipids. Environmental Research, 133, 123-134. https://doi.org/10.1016/j.envres.2014.05.019
Freeman, S. (2009). Biología. Freeman - 3ra edición (Tercera Ed.). Madrid.
Galindo, E., Peña, C., y Serrano-Carreón, L. (2014). Domesticar microorganismos en un biorreactor: los retos del bioingeniero. En Aspectos de Ingeniería en fermentaciones: cómo mezclar gases, líquidos y sólidos (pp. 131–143). Academia Mexicana de Ciencias.
Garay, A., de la Paz Sánchez, M., García, B., Álvarez, E., y Gutiérrez, C. (2014). La Homeostasis de las Auxinas y su Importancia en el Desarrollo de Arabidopsis thaliana. REB. Revista de educación bioquímica, 33(1), 13-22. Recuperado de http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1665- 19952014000100003&lng=es&nrm=iso&tlng=es
Garro, G. (2016). Crop and food development through modern biotechnology techniques in Central America Development of food crops through the use of modern biotechnology techniques in Central America. Revista Tecnología en Marcha, 29(5), 54. https://doi.org/10.18845/tm.v29i5.2517
George, E., Hall, M., y Klerk, De. (2008a). Plant Growth Regulators II : Cytokinins , theirAnalogues and Antagonists, Plant propagation by tissue culture. En Plant Propagation by Tissue Culture 3rd Edition, 205-226. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-5005-3_6
George, E., Hall, M. A., y Klerk, De. (2008b). Plant propagation by tissue culture 3rd edition. En Plant Propagation by Tissue Culture, 3(1). https://doi.org/10.1007/978-1-4020-5005- 3
Giraldo C., Ríos O., H., y Polanco, M. (2009). Efecto de dos enraizadores en tres especies forestales promisorias para la recuperación de suelos. Revista de Investigación Agraria y Ambiental, 1(1), 41. https://doi.org/10.22490/21456453.889
Gupta, R., y Chakrabarty, S. (2013). Gibberellic acid in plant: Still a mystery unresolved. Plant Signaling and Behavior, 8(9). https://doi.org/10.4161/psb.25504
Hernández, R., Rojas, D., Contreras, M., Orozco, M., Macías, L., Reyes, H.,Santoyo, G. (2015). Characterization of the antifungal and plant growth-promoting effects of diffusible and volatile organic compounds produced by Pseudomonas fluorescens strains. Biological Control, 81, 83-92. https://doi.org/10.1016/j.biocontrol.2014.11.011
Hernández, E., y Martínez, I. (2016). Brasinoesteroides en la agricultura. I. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 7(2), 441-450.
Hosny, S. M., Hammad, G., Sharbasy, S., y Zayed, Z. (2016). Effect of Coconut Milk, Casein Hydrolysate and Yeast Extract on the Proliferation of in vitro Barhi Date Palm (Phoenix dactylifera L.). Journal of Horticultural Science & Ornamental Plants, 8(1), 46-54. https://doi.org/10.5829/idosi.jhsop.2016.8.1.1172
Hussain, A., Ahmed, I., Nazir, H., y Ullah, I. (2012). Recent Advances in Plant in vitro Culture.
En Annarita Leva. DOI: 10.5772/52760
Imran, Q., y Yun, B. (2020). Pathogen-induced Defense Strategies in Plants. Journal of Crop Science and Biotechnology, 23(2), 97-105. https://doi.org/10.1007/s12892-019-0352-0
Ishak, Z., Iswadi, M., Russman, A., Ahmad, M., Ernie, R., Wan, A., y Ainon, H. (2016). Plant growth hormones produced by endophytic Bacillus subtilis strain LKM-BK isolated from cocoa. Malaysian Cocoa Journal, 9(1), 127-133. Recuperado dehttps://www.researchgate.net/publication/312495410_PLANT_GROWTH_HORMONE S_PRODUCED_BY_ENDOPHYTIC_Bacillus_subtilis_STRAIN_LKM- BK_ISOLATED_FROM_COCOA
Jamal, A., Rakibuzzaman, M., Raisa, I., Maliha, M., y Husna, M. (2020). Impact of natural substances and synthetic hormone on grapevine cutting. Journal of Bioscience and Agriculture Research, 25(1), 2069-2074. https://doi.org/10.18801/jbar.250120.253
Jang, S., y Kuk, Y. (2019). Growth promotion effects of plant extracts on various leafy vegetable crops. Horticultural Science and Technology, 37(3), 322-336. https://doi.org/10.7235/HORT.20190033
Jasim, B., John, C., Jyothis, M., y Radhakrishnan, E. (2013). Plant growth promoting potential of endophytic bacteria isolated from Piper nigrum. Plant Growth Regulation, 71(1), 1- 11. https://doi.org/10.1007/s10725-013-9802-y
Junior, A., Oliviera, A., Oliviera, L., Santos, G., Chagas, L., Silva, A., y Costa, J. (2015). Production of Indole-3-Acetic Acid By Bacillus Isolated From Different Soils. Bulgarian Journal of Agricultural Science, 21(2), 282-287. Recuperado de https://www.semanticscholar.org/paper/PRODUCTION-OF-INDOLE-3-ACETIC- ACID-BY-BACILLUS-FROM-Chagas-
Chagas/c8ade7126015f4f2f7f7af52c17525eec95248a0
Karnawal, A. (2009). Production of indole acetic acid by fluorescent pseudomonas in the presence of l-tryptophan and rice root exudates. Journal of Plant Pathology, 91(1), 61- 63. https://doi.org/10.1080/01904167.2015.1112950
Kaur, R., Tiburcio, A., Altabella, T., y Galston, A. (2003). Polyamines in plants : An overview. Journal of Cell and Molecular Biology, 2, 1-12. Recuperado de http://citeseerx.ist.psu.edu/viewdoc/download?doi=10.1.1.460.7929&rep=rep1&type=p df
Kesaulya, H., Hasinu, J., y Tuhumury, G. (2018). Potential of Bacillus spp. produces siderophores insuppressing thewilt disease of banana plants. IOP Conference Series: Earth and Environmental Science, 102(1). https://doi.org/10.1088/1755-1315/102/1/012016
Lara, C., Oviedo, L., y Betancur, C. (2011). Bacterias nativas con potencial en la producción de ácido indolacético para mejorar los pastos. Zootecnia Tropical, 29(2), 187-194. Recuperado de http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0798- 72692011000200005
Liu, X., Wu, S., Xu, J., Sui, C., y Wei, J. (2017). Application of CRISPR/Cas9 in plant biology.
Acta Pharmaceutica Sinica B, 7(3), 292-302. https://doi.org/10.1016/j.apsb.2017.01.002
Mansour, F., Aldesuquy, H., y Hamedo, H. (1994). Studies on plant growth regulators and enzyme production by some bacteria. Qatar University Science Journal, 14(2), 281-288. Recuperado de https://qspace.qu.edu.qa/handle/10576/10108
Martins, J., Schimildt, E., Alexandre, R., Santos, B., y Magevski, G. (2013). Effect of synthetic auxins on in vitro and ex vitro bromeliad rooting. Pesquisa Agropecuária Tropical, 43(2), 138-146. https://doi.org/10.1590/s1983-40632013000200009
Mcdougall, P. (2011). The Cost and Time Involved in the Discovery, Development and Authorisation of a New Plant Biotechnology Derived Trait. Consultancy Study for Crop Life International. R&D Study, (September), 1-24. Recuperado de https://croplife.org/wp- content/uploads/2014/04/Getting-a-Biotech-Crop-to-Market-Phillips-McDougall- Study.pdf
Meena, V., Maurya, B., y Verma, J. (2014). Does a rhizospheric microorganism enhance K+availability in agricultural soils? Microbiological Research, 169(5-6), 337-347. https://doi.org/10.1016/j.micres.2013.09.003
Meena, V. S., Mishra, P. K., Bisht, J. K., y Pattanayak, A. (2017). Bio-stimulants: An approach towards the sustainable vegetable production. En V. S. Meena, K. Shubha, A. Mukherjee,
M. Kumari, K. Tiwari, y V. S. Meena (Eds.), Agriculturally Important Microbes for Sustainable Agriculture (Vol. 1, pp. 269–277). Springer Nature Singapore. https://doi.org/10.1007/978-981-10-5589-8
Melgarejo, L. (2010). Experimentos de fisiología vegetal (Primera Ed). Bogotá DC:Universidad Nacional de Colombia. Recuperado de http://bdigital.unal.edu.co/8545/
Mendoza, B. (2013). Evaluación de la eficacia de cuatro enraizadores y dos tamaños de estacas en la propagación de naranjilla (solanum quitoense) híbrido puyo, en vivero en el cantón san miguel de los bancos, provincia de pichincha. (Escuela Superior Politécnica de Chimborazo; Vol. 1). Escuela Superior Politécnica de Chimborazo. Recuperado de http://dspace.espoch.edu.ec/handle/123456789/2799
Mgbeahuruike, E., Yrjönen, T., Vuorela, H., y Holm, Y. (2017). Bioactive compounds from medicinal plants: Focus on Piper species. South African Journal of Botany, 112, 54-69. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2017.05.007
Miezah, K., Ofosu, J., Budu, G., Enu, L., y Cofie, O. (2008). Isolation and identification of some plant growth promoting substances in compost and co-compost. International Journal of Virology, 4,30-40. https://doi.org/10.3923/ijv.2008.30.40
Mohite, B. (2013). Isolation and characterization of indole acetic acid (IAA) producing bacteria from rhizospheric soil and its effect on plant growth. Journal of Soil Science and Plant Nutrition, 13(3), 638-649. https://doi.org/10.4067/S0718-95162013005000051
Morales-rubio, M. E., Espinosa-leal, C., y Garza-padrón, R. A. (2016). Cultivo de tejidos vegetales y su aplicación en productos naturales. En C. Rivas- Morales, M. . Oranday- Cardenas, y M. . Verde-Star (Eds.), Investigación en plantas de importancia médica (pp. 351–410). Barcelona, España: OminiaSciencie. https://doi.org/http://dx.doi.org/10.3926/oms.315
Moreno, A., García, V., Reyes, J., Vásquez, J., y Cano, P. (2018). Rizobacterias promotoras del crecimiento vegetal: una alternativa de biofertilización para la agricultura sustentable. Revista Colombiana de Biotecnología, 20(1), 68-83.
https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v20n1.73707
Nandi, S., Palni, L., y Parker, C. (1990). Dynamics of Endogenous Cytokinins during the Growth Cycle of a Hormone-Autotrophic Genetic Tumor Line of Tobacco. Plant physiology, 94(3), 1084-1089. https://doi.org/10.1104/pp.94.3.1084Naziya, B., Murali, M., y Amruthesh, K. (2020). Plant growth-promoting fungi (Pgpf) instigate plant growth and induce disease resistance in Capsicum annuum L. upon infection with Colletotrichum capsici (Syd.) Butler & Bisby. Biomolecules, 10(41), 1-18. https://doi.org/10.3390/biom10010041
Ndjonka, D., Rapado, L., Silber, A., Liebau, E., y Wrenger, C. (2013). Natural products as a source for treating neglected parasitic diseases. International Journal of Molecular Sciences, 14(2), 3395-3439. https://doi.org/10.3390/ijms14023395
Okukpe, K., Adeloye, A., Belewu, M., Alii, O., Adeyina, O., y Annongu, A. (2012). Investigation of phytohormonal potential of some selected tropical plants. Research Journal of Medicinal Plant, 6(6), 425-432. https://doi.org/10.3923/rjmp.2012.425.432
Pascolini, P. (2013). Estimulación del enraizamiento de estacas con extractos de Salix fragilis, Plantago lanceolata y Aloe vera (Universidad Nacional de Río Negro). Universidad Nacional de Río Negro. Recuperado de https://rid.unrn.edu.ar/handle/20.500.12049/501
Patil, V. (2019). Isolation of Indole acetic acid producing bacteria from digester effluent and their effect on plant growth promotion. International Research Journal of Biological Sciencies, 8(1), 1-9. Recuperado de http://www.isca.in/IJBS/Archive/v8/i1/1.ISCA- IRJBS-2018-044.php
Pini, F., Galardini, M., Bazzicalupo, M., y Mengoni, A. (2011). Plant-bacteria association and symbiosis: Are there common genomic traits in alphaproteobacteria? Genes, 2(4), 1017- 1032. https://doi.org/10.3390/genes2041017
Poupin, M., Timmermann, T., Vega, A., Zuñiga, A., y González, B. (2013). Effects of the Plant Growth-Promoting Bacterium Burkholderia phytofirmans PsJN throughout the Life Cycle of Arabidopsis thaliana. PLoS ONE, 8(7), 22-24.
https://doi.org/10.1371/journal.pone.0069435
Prasad, A., y Babu, S. (2016). Compatibility of Azospirillum brasilense and Pseudomonas fluorescens in growth promotion of groundnut (Arachis hypogea L.). Anais da Academia Brasileira de Ciencias, 89(2), 1027-1040. https://doi.org/10.1590/0001-3765201720160617
Pratheesh, P., Shonima, G., Thomas, J., Abraham, C., y Muraleedhara Kurup, G. (2012). Study on efficacy of different Agrobacterium tumefaciens strains in genetic transformation of microalga Chlamydomonas reinhardtii. Advances in Applied Science Research, 3(5), 2679-2686. Recuperado de www.pelagiaresearchlibrary.com
Radice, S. (2010). Biotecnología y Mejoramiento Vegetal II. En G. Levitus, V. Echenique, E. Hopp, y L. Mroginski (Eds.), Consejo Argentino para la Información y el Desarrollo de la Biotecnología (Segunda). Intituto Nacional de Tecnología Agropecuaria.
Roy, S., Asaduzzaman, M., Pramanik, M., y Prodhan, A. (2006). Effect of Banana Plant Extracts on Germination and Seedling Growth of Some Vegetable Crops. Bangladesh Journal Crop Science, 17(1), 235–242.
Sajjad, Y., Jaskani, M., Asif, M., y Qasim, M. (2017). Application of plant growth regulators in ornamental plants: A review. Pakistan Journal of Agricultural Sciences, 54(2), 327- 333. https://doi.org/10.21162/PAKJAS/17.3659
Salazar, S., Martínez-Montiel, N., Garcí, J., Pérez, R., y Martínez, R. (2018). Gibberellin biosynthesis and metabolism: A convergent route for plants, fungi and bacteria. Microbiological Research, 208, 85-98. https://doi.org/10.1016/j.micres.2018.01.010
Sherif, F. (2017). Aloe vera Leaf Extract as a Potential Growth Enhancer for populus trees Grown Under in vitro Conditions. American Journal of Plant Biology, 2(4), 101-105. https://doi.org/10.11648/J.AJPB.20170204.11
Shi, T., Peng, H., Zeng, S., Ji, R., Shi, K., Huang, H., y Ji, X. (2017). Microbial production of plant hormones: Opportunities and challenges. Bioengineered, 8(2), 124-128. https://doi.org/10.1080/21655979.2016.1212138
Sivasankari, B., Anandharaj, M., y Daniel, T. (2014). Effect of PGR producing bacterial strains isolated from vermisources on germination and growth of Vigna unguiculata (L.) Walp. Journal of Biochemical Technology, 5(4), 808–813. Recuperado de https://search.proquest.com/openview/d9b652d1bae765d0e190d57d6feccf3b/1?pq-origsite=gscholar&cbl=4425143
Smith, S. M., Li, C., y Li, J. (2017). Hormone function in plants. En C. Rowley (Ed.), Hormone Metabolism and Signaling in Plants (pp. 1–38). Elservier Ltd. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-811562-6.00001-3
Somers, E., Ptacek, D., Gysegom, P., Srinivasan, M., y Vanderleyden, J. (2004). Azospirillum brasilense produces the auxin-like phenylacetic acid by using the key enzyme for indole- 3-acetic acid biosynthesis. Applied and Environmental Microbiology, 71(4), 1803-1810. https://doi.org/10.1128/AEM.71.4.1803
Sridhar, T., y Aswath, C.(2014). Influence of Additives on Enhanced in Vitro Shoot Multiplication of Stevia rebaudiana (Bertoni) Bertoni. An Important Anti Diabetic Medicinal Plant. American Journal of Plant Sciences, 05(01), 192-199. https://doi.org/10.4236/ajps.2014.51025
Tadeu, J. (2019). Plant growth regulators in horticulture: practices and perspectives. Biotecnología Vegetal, 19(1), 3-14. Recuperado de http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S2074- 86472019000100003&lng=en&nrm=iso&tlng=es
Uzair, B., Kausar, R., Bano, S., Fatima, S., Badshah, M., Habiba, U., y Fasim, F. (2018). Isolation and Molecular Characterization of a Model Antagonistic Pseudomonas aeruginosa Divulging in Vitro Plant Growth Promoting Characteristics. BioMed Research International, 2018, 1-7. https://doi.org/10.1155/2018/6147380
Vega, P., Canchignia, H., González, M., y Seeger, M. (2016a). Biosynthesis of indole-3-acetic acid and plant growth promoting by bacteria. Cultivos Tropicales, 37(especial), 33-39. https://doi.org/10.13140/RG.2.1.5158.3609
Vega, P., Canchignia, H., González, M., y Seeger, M. (2016b). Review: Biosynthesis of indole- 3-acetic acid and plant growth promoting by bacteria. Cultivos Tropicales, 37(especial), 33-39. https://doi.org/10.13140/RG.2.1.5158.3609
Venkatachalam, P., Kalaiarasi, K., y Sreeramanan, S. (2015). Influence of plant growthregulators (PGRs) and various additives on in vitro plant propagation of Bambusa arundinacea (Retz.) Wild: A recalcitrant bamboo species. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology, 13(2), 193-200. https://doi.org/10.1016/j.jgeb.2015.09.006
Wani, S., Kumar, V., Shriram, V., y Sah, S. (2016). Phytohormones and their metabolic engineering for abiotic stress tolerance in crop plants. Crop Journal, 4(3), 162-176. https://doi.org/10.1016/j.cj.2016.01.010
Wu, Z., Peng, Y., Guo, L., y Li, C. (2014). Root colonization of encapsulated klebsiella oxytoca rs-5 on cotton plants and its promoting growth performance under salinity stress. European Journal of Soil Biology, 60, 81-87. https://doi.org/10.1016/j.ejsobi.2013.11.008
Yong, J.., Ge, L., Ng, Y., y Tan, S. (2009). The Chemical Composition and Biological Properties of Coconut (Cocos nucifera L.) Water. Molecules, 14(12), 5144-5164. https://doi.org/10.3390/molecules14125144
Yu, J., Yu, Z., Fan, G., Wang, G., y Liu, X. (2016). Isolation and characterization of indole acetic acid producing root endophytic bacteria and their potential for promoting crop growth. Journal of Agricultural Science and Technology, 18(5), 1381-1391. Recuperado de https://jast.modares.ac.ir/article-23-9488-en.html
Zou, Y., Chang, S., Gu, Y., y Qian, S. (2011). Antioxidant activity and phenolic compositions of lentil (Lens culinaris var. morton) extract and its fractions. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 59(6), 2268-2276. https://doi.org/10.1021/jf104640k
